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RNA结合蛋白ERα可以支持肿瘤细胞生存和抵抗抗癌药物

时间:2019-10-18 04:54:55

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RNA结合蛋白ERα可以支持肿瘤细胞生存和抵抗抗癌药物

撰文 | 我的闺蜜老红帽

#肿瘤#

乳腺癌是当今社会发病率最高的几类癌症之一,而经研究统计指出,70%乳腺癌病人的重要核内荷尔蒙受体雌激素受体α(estrogen receptor,简称ERα)都处于活化状态【1】。之前,学界对ERα的功能已经进行了广泛和深入的研究,尤其是其在细胞核内调控转录过程中以及影响乳腺癌病程等方面。事实上,ERα拮抗剂它莫昔芬(tamoxifen)在临床上是治疗乳腺癌的一线药物,它可以通过抑制ERα的活性来调节转录过程,延长病人的生存周期【2,3】。然而有一定比例的病人最终产生耐药性【4】,而这些病人的ERα仍旧处在活化状态【5,6】,产生此种现象的原因以及具体机制仍旧不得而知。

近日,来自美国加州大学旧金山分校的Davide Ruggero研究组在Cell上发表题为 ERα is an RNA-binding protein sustaining tumor cell survival and drug resistance 的文章,发现ERα可以与RNA相结合,这也是肿瘤耐药性的分子基础。

有报道指出,ERα是一类核质穿梭蛋白(nucleocytoplasmic shuttling protein),可以在细胞核与细胞质之间自由而迅速的移动【7】。为了研究ERα在细胞核之外行使何种功能,作者通过免疫共沉淀联合质谱的方法,发现ERα可以与多种RNA结合蛋白发生蛋白质相互作用。为了确定ERα是否也是一类RNA结合蛋白,作者通过oligo(dT) 珠子pull down实验确定,在乳腺癌细胞系MCF7 和T47D中,ERα都可以与大量poly(A) RNA相结合。

接下来,作者研究ERα是直接与RNA结合,还是通过其它分子介导。作者通过的辐射交联和免疫共沉淀(ultraviolet radiation cross-linking and co-immunoprecipitation ,简称CLIP)方法,明确发现ERα-RNA复合物,这也是ERα与RNA直接相互作用的有力证据。另外,作者还进一步研究确定259-262位氨基酸是ERα与RNA的结合部位。

再下来,作者集中研究上述确定的ERα的RNA结合活性的具体功能。作者在乳腺癌细胞系MCF7 和T47D中突变其RNA结合区域后,发现癌细胞的增殖速率明显降低。随后,作者通过CRISPRi 筛选的方法,在一组sgRNA库中,筛选出MCL1,eIF4G2和XBP1这三种蛋白,其对应RNA可以与ERα相结合,并且参与细胞周期和凋亡进程。其中,XBP1是一类重要的转录因子,它的剪切后形态(也称XBP1s)转录活性更加强大,在压力作用下可以促进细胞生存,在多种癌细胞中,当然也包括乳腺癌,是作为原癌基因而存在的【8】。作者还发现,在MCF7细胞系上抑制ERα的RNA结合活性,基本上可以完全抑制XBP1的RNA在内质网上的剪切装配。另外,MCL1是BCL-2抗凋亡蛋白家族成员,而eIF4G2参与细胞生长相关蛋白的翻译过程。作者也确定,在MCF7细胞系上抑制ERα的RNA结合活性,同样也可以显著抑制MCL1和eIF4G2的翻译。这些工作最终说明,ERα的RNA结合活性,可以调控多种分子的转录后修饰,包括抑制XBP1的剪切,和阻碍MCL1和eIF4G2的表达。

最后,作者研究上述机制在乳腺癌抗药性中的具体作用。作者发现,在ERα+的乳腺癌病人病灶中,ERα的转录后修饰靶点,如MCL1,eIF4G2和XBP1与正常人群相比,表达水平均有显著升高。另外,在长期它莫昔芬处理后的低敏感MCF7细胞系中,它莫昔芬的药效,包括阻断细胞周期和诱导细胞凋亡,都被一定程度的拮抗了。最后,作者在NSG小鼠中移植ERα的RNA结合区域突变的TamR 细胞,发现与移植野生型细胞的对照小鼠相比,实验组小鼠肿瘤生长明显减缓,它莫昔芬的药效也明显增强。

综上所述,作者通过多种细胞和生化手段确定,乳腺癌关键转录因子ERα可以与RNA直接结合,其RNA结合活性多种转录后修饰过程中,包括XBP1的剪切和MCL1、eIF4G2的表达等,具有至关重要的作用,也因此调控肿瘤细胞的生长和抗癌药物的药效。

原文链接:

/10.1016/j.cell..08.036

参考文献

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3. Shiau, A.K., Barstad, D., Loria, P.M., Cheng, L., Kushner, P.J., Agard, D.A., and Greene, G.L. (1998). The structural basis of estrogen receptor/coactivator recognition and the antagonism of this intERαction by tamoxifen. Cell95, 927–937.

4. Metcalfe, C., Friedman, L.S., and Hager, J.H. (). Hormone-Targeted Ther- apy and Resistance. Annu. Rev. Cancer Biol.2, 291–312.

5. Jeselsohn, R., Buchwalter, G., De Angelis, C., Brown, M., and Schiff, R. (). ESR1 mutations—a mechanism for acquired endocrine resistance in breast cancer. Nat. Rev. Clin. Oncol.12, 573–583.

6. Katzenellenbogen, J.A., Mayne, C.G., Katzenellenbogen, B.S., Greene, G.L., and Chandarlapaty, S. (). Structural underpinnings of oestrogen receptor mutations in endocrine thERαpy resistance. Nat. Rev. Cancer18, 377–388.

7. Lombardi, M., Castoria, G., Migliaccio, A., Barone, M.V., Di Stasio, R., Cio- ciola, A., Bottero, D., Yamaguchi, H., Appella, E., and Auricchio, F. (). Hor- mone-dependent nuclear export of estradiol receptor and DNA synthesis in breast cancer cells.J. Cell Biol. 182, 327–340.

8. Walter, P., and Ron, D. (). The unfolded protein response: from stress pathway to homeostatic regulation. Science334, 1081–1086.

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